固相萃取(SolidPhaseExtractionSPE)就是利用固體吸附劑將液體樣品中的目標(biāo)化合物吸附，與樣品的基體和干擾化合物分離，然后再用洗脫液洗脫或加熱解吸附，達(dá)到分離和富集目標(biāo)化合物的目的。

　　與液-液萃取相比固相萃取有很多優(yōu)點：固相萃取不需要大量互不相溶的溶劑，處理過程中不會產(chǎn)生乳化現(xiàn)象，它采用高效﹑高選擇性的吸附劑(固定相)，能顯著減少溶劑的用量，簡化樣品于處理過程，同時所需費用也有所減少。一般說來固相萃取所需時間為液-液萃取

的1/2，費用為液-液萃取的1/5。其缺點是：目標(biāo)化合物的回收率和精密度要低于液-液萃取。

一、固相萃取的模式及原理

　　固相萃取實質(zhì)上是一種液相色譜分離，其主要分離模式也與液相色譜相同，可分為正相(吸附劑極性大于洗脫液極性)，反相(吸附劑極性小于洗脫液極性)，離子交換和吸附。固相萃取所用的吸附劑也與液相色譜常用的固定相相同，只是在粒度上有所區(qū)別。

1、正相固相萃取所用的吸附劑都是極性的，用來萃取(保留)極性物質(zhì)。在正相萃取時目標(biāo)化合物如何保留在吸附劑上，取決于目標(biāo)化合物的極性官能團與吸附劑表面的極性官能團之間相互作用，其中包括了氫鍵，π—π鍵相互作用，偶極-偶極相互作用和偶極-誘導(dǎo)偶極相互作用以及其他的極性-極性作用。正相固相萃取可以從非極性溶劑樣品中吸附極性化合物。

2、反相固相萃取所用的吸附劑通常是非極性的或極性較弱的，所萃取的目標(biāo)化合物通常是中等極性到非極性化合物。目標(biāo)化合物與吸附劑間的作用是疏水性相互作用，主要是非極性-非極性相互作用，是范德華力或色散力。

3、離子交換固相萃取所用的吸附劑是帶有電荷的離子交換樹脂，所萃取的目標(biāo)化合物是帶有電荷的化合物，目標(biāo)化合物與吸附劑之間的相互作用是靜電吸引力。

4、固相萃取中吸附劑(固定相)的選擇主要是根據(jù)目標(biāo)化合物的性質(zhì)和樣品基體(即樣品的溶劑)性質(zhì)。目標(biāo)化合物的極性與吸附劑的極性非常相似的時，可以得到目標(biāo)化合物的最佳保留(最佳吸附)。兩者極性越相似，保留越好(即吸附越好)，所以要盡量選擇與目標(biāo)化合物極性相似的吸附劑。例如：萃取碳?xì)浠衔?非極性)時，要采用反相固相萃取(此時是非極性吸附劑)。當(dāng)目標(biāo)化合物極性適中時，正﹑反相固相萃取都可使用。吸附劑的選擇還要受樣品的溶劑強度(即洗脫強度)的制約。

　　樣品溶劑的強度相對該吸附劑應(yīng)該是較弱的，弱溶劑會增強目標(biāo)化合物在吸附劑上的保留(吸附)。溶劑強度在正﹑反固相萃取中的順序是不同的。如果樣品溶劑的強度太強，目標(biāo)化合物將得不到保留(吸附)或保留很弱。例如：樣品溶劑是正己烷時用反相固相萃取就不合適了，因為正己烷對反相固相萃取是強溶劑，目標(biāo)化合物將不會吸附在吸附劑上;當(dāng)樣品溶劑是水時就可以用反相固相萃取，因為水對反相固相萃取是弱溶劑，不會影響目標(biāo)化合物在吸附劑上的吸附。

　　固相萃取選擇分離模式和吸附劑時還要考慮以下幾點：

　　1.目標(biāo)化合物在極性或非極性溶劑中的溶解度，這主要涉及淋洗液的選擇。

　　2.目標(biāo)化合物有無可能離子化(可用調(diào)節(jié)pH值實現(xiàn)離子化)，從而決定是否采用離子交換固相萃取。

　　3.目標(biāo)化合物有無可能與吸附劑形成共價鍵，如形成共價鍵，在洗脫時可能會遇到麻煩。

　　4.非目標(biāo)化合物與目標(biāo)化合物在吸附劑上吸附點上的競爭程度，這關(guān)系到目標(biāo)化合物與干擾化合物是否能很好分離。

二、固相萃取常用的吸附劑(固定相)

鑒于固相萃取實質(zhì)上是一種液相色譜的分離，故原則上講，可作為液相色譜柱填料的材料都可用于固相萃取。但是，由于液相色譜的柱壓可以較高，要求柱效較高，故其填料的粒度要求較嚴(yán)格，過去常用10μm粒徑填料，現(xiàn)在高效柱多用5μ的m填料，甚至用了3μm的填料(隨著HPLC泵壓的提高，填料的粒徑在逐漸減小)。對填料的粒徑分布要求也很窄。固相萃取柱上所加壓一般都不大，分離目的只是把目標(biāo)化合物與干擾化合物和基體分開即可，柱效要求一般不高，故作為固相萃取吸附劑的填料都較粗，一般在40μm即可用，粒徑分布要求也不嚴(yán)格，這樣可以大大降低固相萃取柱的成本?！　?/p>

如果在選擇吸附劑時，選擇對目標(biāo)化合物吸附很弱或不吸附，而對干擾化合物有較強吸附的吸附劑時，也可讓目標(biāo)化合物先淋洗下來加以收集，而使干擾化合物保留(吸附)在吸附劑上，兩者得到分離。在多數(shù)的情況下是使目標(biāo)化合物保留在吸附劑上，最后用強溶劑洗脫，這樣更有利于樣品的凈化。

三、固相萃取的裝置及操作程序

最簡單的固相萃取裝置就是一根直徑為數(shù)毫米的小柱，小柱可以是玻璃的，也可以是聚丙稀﹑聚乙烯﹑聚四氟乙烯等塑料的，還可以是不銹鋼制成的。小柱下端有一孔徑為20μm的燒結(jié)篩板，用以支撐吸附劑。如自制固相萃取小柱沒有合適的燒結(jié)篩板時，也可以用填加玻璃棉來代替篩板，起到既能支撐固體吸附劑，又能讓液體流過的作用。在篩板上填裝一定量的吸附劑(100㎎~1000㎎，視需要而定)，然后在吸附劑上再加一塊篩板，以防止加樣品時破壞柱床(沒有篩板時也可以用玻璃棉替代)。目前已有各種規(guī)格的﹑裝有各種吸附劑的固相萃取小柱出售，使用起來十分方便。

為了方便固相萃取的使用，很多廠家除了生產(chǎn)各種規(guī)格和型號的固相萃取小柱之外，還研制開發(fā)了很多固相萃取的專用裝置，使固相萃取使用起來更加方便簡單。如Supelco公司提供了給單個固相萃取小柱加壓的單管處理塞，可方便的與固相萃取小柱配套使用。又如，為了能使多個固相萃取小柱同時進(jìn)行抽真空，Supelco公司提供了12孔徑和24孔徑的真空多歧管裝置，可同時處理多個固相萃取小柱。我國中科院大連化學(xué)物理研究所，國家色譜研究分析中心也研制開發(fā)了真空固相萃取裝置。

　　固相萃取的一般操作程序如下：

　　1.活化吸附劑：在萃取樣品之前要用適當(dāng)?shù)娜軇┝芟垂滔噍腿⌒≈?，以使吸附劑保持濕潤，可以吸附目?biāo)化合物或干擾化合物。不同模式固相萃取小柱活化用溶劑不同：

　　(1)反相固相萃取所用的弱極性或非極性吸附劑，通常用水溶性有機溶劑，如甲醇淋洗，然后用水或緩沖溶液淋洗。也可以在用甲醇淋洗之前先用強溶劑(如己烷)淋洗，以消除吸附劑上吸附的雜質(zhì)及其對目標(biāo)化合物的干擾。

　　(2)正相固相萃取所用的極性吸附劑，通常用目標(biāo)化合物所在的有機溶劑(樣品基體)進(jìn)行淋洗。

　　(3)離子交換固相萃取所用的吸附劑，在用于非極性有機溶劑中的樣品時，可用樣品溶劑來淋洗;在用于極性溶劑中的樣品時，可用水溶性有機溶劑淋洗后，再用適當(dāng)PH值的﹑并含有一定有機溶劑和鹽的水溶液進(jìn)行淋洗。

　　為了使固相萃取小柱中的吸附劑在活化后到樣品加入前能保持濕潤，應(yīng)在活化處理后在吸附劑上面保持大約1ml活化處理用的溶劑。

　　2.上樣：將液態(tài)或溶解后的固態(tài)樣品倒入活化后的固相萃取小柱，然后利用抽真空，加壓或離心的方法使樣品進(jìn)入吸附劑。

　　3.洗滌和洗脫：在樣品進(jìn)入吸附劑，目標(biāo)化合物被吸附后，可先用較弱的溶劑將弱保留干擾化合物洗掉，然后再用較強的溶劑將目標(biāo)化合物洗脫下來，加以收集。淋洗和洗脫同前所述一樣，可采用抽真空，加壓或離心的方法使淋洗液或洗脫液流過吸附劑。

四、固相萃取的應(yīng)用

固相萃取主要用于復(fù)雜樣品中微量或痕量目標(biāo)化合物的分離和富集。例如，生物體液(如血液，尿等)中藥物及其代謝產(chǎn)物的分析，食品中有效成分或有害成分的分析，環(huán)保水樣中各種污染物(可揮發(fā)性有機物和半揮發(fā)性有機物)的分析都可使用固相萃取將目標(biāo)化合物分離出來，并加以富集，然后進(jìn)行色譜分析。

下面舉兩個具體分析實例加以說明。

1.血漿中苯并二氮雜草類藥物(安定)的測定

　　使用6ml的固相萃取柱，柱內(nèi)填加500㎎C18吸附劑。用5ml甲醇活化，然后再用5ml水淋洗。將1ml0.1M醋酸鈉加入4ml血漿中，充分混合后倒入萃取柱內(nèi)，抽濾。然后加入3ml水，抽濾30秒。再將固相萃取柱在1000~1500rpm離心機上離心5分鐘。用3ml丙酮洗脫，收集洗脫液，將洗脫液在氮氣流下緩緩加熱(<45℃)至干燥。用200μl甲醇溶解殘渣，進(jìn)樣20μl，進(jìn)行HPLC分析。

　　HPLC條件：柱子:ODS-35μm150×4.6mm

　　流動相:乙腈/甲醇/5mMKH2PO4(15/30/55)

　　流速:2ml/min

　　柱溫:40℃

　　檢測器:UV254

2.水中多環(huán)芳烴(PAHS)的測定

　　使用6ml固相萃取柱，柱內(nèi)填加500mgC18吸附劑，用5ml二氯甲烷活化,然后再用5ml甲醇和5ml水重復(fù)一次。加2ml異丙醇到20ml水樣中(10%異丙醇含量)，混合后倒入固相萃取柱，流速不得大于10ml/min。用3ml甲醇/水(50/50)淋洗，抽真空30秒，再將固相萃取柱在1000~1500rpm離心機上離心5分鐘。用3ml二氯甲烷洗脫，收集洗脫液。將洗脫液在干燥氮氣流下濃縮到50~200μl，濃縮時樣品不要加熱，以免造成小分子多環(huán)芳烴的丟失。加二氯甲烷至總體積為200μl，進(jìn)樣20μl，進(jìn)行GC分析。

　　GC條件：柱DB-530m×0.25mmID0.25μ載氣：氮氣線速度為35cm/秒(65℃)

　　程序升溫：65℃停留1分鐘后以25℃/分的升溫速率升至140℃，然后以10℃/分的升溫速

　　率升至290℃，在290℃停留25分鐘。進(jìn)樣：275℃不分流進(jìn)樣，吹掃45秒

檢測器：FID300℃尾吹氮氣30ml/分

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